Prácticas Microbiología

Siembra en anaerobiosis                                                                                    18-2-2020 Objetivo En esta práctica vamos a realizar el crecimiento de microorgansmos en anaerobiosis Materiales --> Placa petri con agar sangre --> Mechero --> Hisopo --> Jarra de anaerobiosis --> Estufa --> Microscopio Procedimiento 1.Pasamos un hisopo por la boca para recoger el microorganismo 2.Sembramos la placa con agar sangre por agotamiento de estrias 3.Colocamos la placa en la jarra de anaerobiosis y colocamos un sobre abierto de GENbox anaer. 4.Incubamos a 37º durante 24 h

Visualización de hongos con técnica de fixo                                                         18-2-2020 Objetivo En esta práctica vamos a realizar observación de hongos al microscopio Materiales --> Porta --> Cubre --> Pinzas --> Fiso --> Azul de lactofenol --> Microscopio Procedimiento 1.Cogimos un trozo de fixo y lo pegamos sobre el hongo con ayuda de unas pinzas 2.Colocamos el fixo boca arriba sobre un porta 3.Añadimos una gota de azul de lactofenol 4.Colocamos un cubre encima y observamos al microscopio

Tinción simple de hongos                                                                                13-2-2020 Objetivo En esta práctica vamos a aprender a determinar la presencia de hongos y su observación Fundamento La tinción de Azul de lactofenol se emplea para observar hongos. Es una tinción simple y como tal esta basada en la afinidad del colorante por componentes de las células, en este caso por las estructuras fungicas Materiales --> Mechero --> Asa de siembra --> Porta y cubre --> Microscopio Procedimiento 1.Sobre un porta limpio depositamos 2 gotas de azul de lactofenol 2.Con el asa de siembra cogimos una colonia y la depositamos sobre el porta , realizando una extensión 3.Cubrimos la preparación con un cubre y observamos al microscopio

Siembra de hongos                                                                                          11-2-2020 Fundamento Los hongos son generalmente aerobios estrictos, en cambio las levaduras pueden crecer con o sin oxigeno; en presencia de este crecen mejor. Las levaduras crecen mas rápido que los hongos. Existen varios medios de cultivo recomendados para alimentos,para reducir el crecimiento bacteriano, algunos utilizan valores de pH bajos, otros la adición a los antibióticos Objetivo En esta práctica vamos a conocer el numero de mohos y levaduras que contiene un alimento Materiales --> Gradilla --> Asa de siembra --> Portaobtejos y cubre Procedimiento 1.Con un asa de siembra cogimos muestra de una mandarina y lo extendimos sobre un medio de cultivo 2.Incubamos a 25º durante 48 h

Test de filamentación                                                                                       7-2-2020 Objetivo En esta práctica vamos a aprender realizar el test de filamentación sirve para poder detectar el tubo germinal de C.albicans Fundamento El tubo germinal es una extensión filamentosa de la levadura, sin estrechamiento en su origen, cuyo ancho suele ser la mitad de la célula progenitora y su longitud es tres o cuatro veces mayor que la célula madre. Esta prueba es util para diferenciar C.albicans del resto de la especies de Candida, aunque no esta exenta de falsos negativos Materiales --> Mechero --> Gradilla --> Tubos --> Asa de siembra --> Estufa --> Microscopio --> Porta y cubre objetos Procedimiento 1.Suspendimos una colonia de Candida albicans en 0,5 ml de suero humano, incubamos a 37º durante 2 horas y depositamos una gota de la emulsión sobre un porta, colocamos un cubre y observamos

Exudado vaginal                                                                                            4-2-2020 Objetivo En esta práctica vamos a aprender a realizar un cultivo y un frotis para determinar la posibilidad de infección de enfermedades de transmisión sexual Fundamento Se realiza un exudado vaginal para determinar la presencia de N.gonorrehae, Candida sp... Materiales --> Hisopos --> Portaobjetos --> Pinzas de madera --> Paralelas --> Cubetas de tinción --> Mechero --> Agua destilada --> Mechero Procedimiento 1.Tomamos la muestra en dos escobillones, un hisopo con medio para la realización de los cultivos y otro sin medio para el frotis con posterior tincion y observación 2.Con uno de los hisopos hicimos dos extensiones, una para tincion de gram y otra para tincion simple 3.Con el otro hisopo realizamos un cultivo en Sabouraud, Mueller Hinton y Agar manito salado 4.Incubamos en la estufa 48h

Urocultivo                                                                                                  23-1-2020 En esta práctica vamos a aprender a realizar un urocultivo en placas de petri y un laminocultivo Materiales --> Asa de siembra -->Mechero -->Placas -->Laminocultivo -->Bote de orina Procedimiento 1.Tomamos una muestra de microorganismo con el asa de siembra 2.Sembramos el microorganismo en tres placas, una con medio Cled, otra con cromogenico y otra con McConkey 3.Sembramos realizando una estria y luego sembrando en masa en la mitad de la placa 4.Incubamos 5.Para el laminocultivo, lo introdujimos en el bote de orina, lo cerramos y lo incubamos en la estufa 6.Tras 24h observamos el crecimiento

Antibiograma                                                                          16-1-2020 En esta práctica vamos a observar la resistencia a los antibioticos de los microorganismos realizando un antibiograma Materiales --> Placa --> Inoculo bacteriano -->SSF -->Hisopo -->Discos de antibiótico --> Mechero Procedimiento 1.Preparamos un inoculo del microorganismo 2.Sembramos con un hisopo el inoculo en una placa de Müeller-Hinton 3.Con unas pinzas estériles colocamos los distintos discos de antibiótico por la placa fijándolos suavemente 4.Incubamos la placa en posición invertida a 37º durante 24h 5.Pasado este tiempo medimos los diámetros de los halos de inhibición

Pruebas bioquímicas para bacilos gram negativos                                            10-1-2020 En esta práctica vamos a realizar las pruebas para la identificación de bacilos gram negativos         Materiales -->Asas de siembra --> Mechero --> Gradilla --> Tubos para pruebas bioquímicas Procedimiento 1.Kligler -Tomamos un colonia del microorganismo -Se siembra en el tubo con hilo de platino en picadura en el fondo del tubo y despues se siembra en estría sobre la superficie del pico de flauta -Se incuba a 37º durante 24h 2.INVIC a)Producción de Indol -En el caldo de peptona se inocula una colonia del microorganismo -Se incuba a 37º durante 24h -Tras ese tiempo se añaden 3 gotas de reactivo de Kovacs -Observamos de que color se forma el anillo b)Rojo de metilo -Se inoculan colonias bacterianas en un tubo con medio de Clark-Lubs -Se incuban a 37º durante 24h -Tras ese tiempo añadimos varias gotas de solución alcohólica de rojo de metilo

Pruebas bioquímicas para cocos gram negativos                                           13-12-2019 En esta practica vamos a realizar las pruebas bioquímicas para la identificación del microorganismo gran negativo Materiales --> Papel de filtro -->Porta --> Gradilla --> Asa de siembra                            --> Discos de ONPG --> Tubos --> Campana d Durham Procedimiento 1.Prueba de la oxidasa -Colocamos un trozo de papel de filtro sobre un porta -Depositamos 2 o 3 gotas de oxidasa -Extendemos una colonia del microorganismo con el asa de siembra -Esperamos entre 5-10 segundos -Observamos si aparece color   2.Prueba de ONPG -En un tubo depositamos 1 ml de SF -Añadimos un disco de ONPG -Añadimos una colonia del microorganismo con el asa de siembra 3.Prueba de fermentación de azucares -En un tubo depositamos 5ml de medio de cultivo -Añadimos una campana de Durham -Añadimos una colonia del microorganismo -Incubamos durante 24h a 37º

Coprocultivo                                                                                       28-1-2020 Objetivo En esta práctica vamos a aprender a aislar e identificar al microorganismo responsable del proceso diarreico Fundamento Microorganismos como los protozoos. bacterias y virus pueden ser responsables de cuadros gastrointestinales. Ante la sospecha de gastroenteritis es necesario realizar un cultivo de heces o coprocultivo que permita aislar e identificar al microorganismo responsable del proceso diarreico Materiales --> Mechero --> Asa de siembra --> Agua destilada --> Medios de cultivo --> Inoculo de la muestra Procedimiento 1.Utilizamos los siguientes medios: Agar SS, caldo selenito, agar sangre, agar hektoen y XLD 2.Realizamos una suspension  en 2,5 ml de solución salina estéril de una porción de heces pequeña 3.Realizamos una siembra en masa en la mitad de todas las placas 4.Una vez sembradas todas las placas introdujimos el hisopo e